Hematologic malignancies in Li–Fraumeni syndrome
- Authors: Kazakova A.N.1, Itov A.B.1
-
Affiliations:
- The Dmitry Rogachev National Medical Research Center of Pediatric Hematology, Oncology and Immunology of Ministry of Healthcare of the Russian Federation
- Issue: Vol 25, No 1 (2026)
- Pages: 203-212
- Section: LITERATURE REVIEW
- Submitted: 06.02.2026
- Accepted: 06.03.2026
- Published: 14.04.2026
- URL: https://hemoncim.com/jour/article/view/1088
- DOI: https://doi.org/10.24287/j.1088
- ID: 1088
Cite item
Full Text
Abstract
Li–Fraumeni Syndrome (LFS) is a rare, autosomal dominant, highly penetrant cancer predisposition syndrome caused by germline mutations in the TP53 (Tumor Protein 53) gene. The classic tumor spectrum of LFS includes adrenocortical carcinomas, breast cancer, central nervous system tumors, osteosarcomas, and soft tissue sarcomas. Hematologic malignancies (HMs) occur in 4–12% of LFS cases, with a predominance of acute lymphoblastic leukemia characterized by a specific cytogenetic variant – a hypodiploid karyotype. Myelodysplastic syndromes and acute myeloid leukemias are less common and are typically secondary to prior cytotoxic therapy. Given the unfavorable prognosis of HMs in LFS and the necessity of bone marrow transplantation as a curative treatment modality, early identification of this patient group and the selection of an optimal donor who does not carry germline TP53 mutations are of high importance. This review presents the fundamental principles of the pathogenetic basis of LFS and clinical screening criteria, providing a detailed description of the spectrum of HMs in LFS, with specific focus on the clinical and laboratory features of the most common variants.
Full Text
Синдром Ли–Фраумени (СЛФ, Li–Fraumeni Syndrome (LFS); Mendelian Inheritance in Man [MIM] #151623) – редкий аутосомно-доминантный высокопенетрантный синдром предрасположенности к развитию злокачественных новообразований, обусловленный герминальными мутациями в гене TP53 (Tumor Protein 53) [1, 2]. В настоящий момент в литературе описано более 400 семей с СЛФ. Предполагаемая распространенность патогенных и вероятно патогенных герминальных вариантов в гене TP53 точно неизвестна, но, по примерным оценкам, колеблется в пределах 1/3000–20 000 [1–5]. К классическому спектру опухолей при СЛФ относят адренокортикальные карциномы, рак молочной железы, опухоли центральной нервной системы (ЦНС), остеосаркомы и саркомы мягких тканей [1–3]. Разнообразие клинических проявлений, ассоциированных с герминальными мутациями в TP53, обосновывает расширение концепции СЛФ до более широкого синдрома, обозначаемого как наследственный TP53-ассоциированный опухолевый синдром (heritable TP53-related cancer, hTP53rc) [6]. Гематологические злокачественные новообразования (ГЗН) изучены в меньшей степени, составляя 4–10% онкологических диагнозов при СЛФ у взрослых и до 12% – у детей [3, 7, 8]. Среди ГЗН при СЛФ превалируют острые лимфобластные лейкозы (ОЛЛ) из В-клеточных предшественников (ВП-ОЛЛ) с характерным цитогенетическим вариантом – низкогиподиплоидным кариотипом, реже встречаются В-клеточные лимфомы, миелодиспластические синдромы (МДС) и острые миелоидные лейкозы (ОМЛ), как правило, индуцированные предшествующей цитотоксической терапией [3, 7–9]. Высокая ассоциация мутаций TP53 с низкогиподиплоидным вариантом ВП-ОЛЛ послужила основанием для включения данного цитогенетического подтипа в критерии генетического тестирования на СЛФ у детей [6, 10, 11].
Актуальность выявления таких случаев в структуре онкогематологических пациентов обусловлена необходимостью трансплантации костного мозга как одного из куративных методов терапии и выбора оптимального донора, не являющегося носителем герминальных мутаций TP53.
История открытия синдрома Ли–Фраумени
СЛФ впервые был описан в 1969 г. Фредериком П. Ли (Frederick P. Li) и Джозефом Ф. Фраумени (Joseph F. Fraumeni Jr) при анализе 4 семей с высокой частотой ранних онкологических заболеваний [12]. Официальное определение СЛФ появилось в 1988 г. при описании 24 семей с высокой аккумуляцией опухолей с ранним дебютом, среди которых преобладали саркомы мягких тканей, рак груди, опухоли ЦНС, лейкозы и адренокортикальные карциномы до 45 лет [13]. Вторым ключевым шагом в истории СЛФ явилось открытие в 1990 г. молекулярно-генетических основ заболевания – герминальных мутаций в гене TP53 [14].
Строение гена TP53, белок TP53 и их роль в онкогенезе
Ген TP53 (MIM #191170) расположен на коротком плече хромосомы 17 (17p13.1), состоит из 11 экзонов и 10 интронов, кодирует белок p53, состоящий из 393 аминокислотных остатков [15, 16].
Белок p53 является транскрипционным фактором, активирующим экспрессию множества генов-мишеней, регулирующих клеточный цикл, апоптоз и поддержание геномной стабильности, вследствие чего получил название «страж генома» [17, 18]. Накапливающиеся данные свидетельствуют, что белок p53 также регулирует клеточный метаболизм, ферроптоз, опухолевое микроокружение, аутофагию и ряд других процессов, совместно вносящих вклад в опухолевую супрессию и определяющих гибель клетки в условиях стресса [19, 20]. Герминальные и соматические мутации в TP53 инактивируют его супрессорную функцию. Мутантный p53 нарушает специфичность связывания с ДНК, дестабилизирует пространственную конформацию белка и его термоустойчивость, приводя к полной дисфункции транскрипционной активности [21].
Белок p53 впервые был открыт в 1979 г., когда Дэвид Лейн и Лайонел Кроуфорд при исследовании роли вирусов в развитии раковых заболеваний обнаружили в индуцированных вирусом обезьяньей оспы SV40 опухолевых клетках комплекс между большим Т-антигеном SV40 и неизвестным клеточным белком весом 53 кДа [16], в результате чего было получено название “Tumor Protein 53”. Последующие исследования выявили, что белок фактически весит 43,7 кДа и состоит из 5 функционально значимых доменов (рисунок 1) [17]. Ключевым является ДНК-связывающий домен (DBD; аминокислотные остатки 94–292). Этот участок ответственен за связывание белка р53 с консенсусной последовательностью ДНК [18]. Образование прочного комплекса ДНК–р53 индуцирует работу 2 автономных трансактивационных доменов (TAD), расположенных в N-концевой части белка (аминокислотные остатки 1–40 составляют TAD1, а 41–73 – TAD2) [19]. Между TAD и DBD (аминокислотные остатки 73–91) находится богатый пролином участок (PRD), который играет важную роль в передаче сигналов, ответственных за антипролиферативный эффект [20–22]. В С-концевой части белка расположены домен тетрамеризации (TD; аминокислотные остатки 320–360) и регуляторный домен (RD; аминокислотные остатки 361–392). TD стабилизирует связывание ДНК–p53 для последующей трансактивации [23], а RD – тетрамерную структуру р53 и контролирует его транскрипционную активность [24, 25]. В условиях цитотоксического стресса синергизм всех функциональных доменов р53 способствует активации ряда специфических транскрипционных путей, ответственных за блокировку клеточного цикла, репарацию ДНК и апоптоз [26].
Рисунок 1. Строение белка р53
Рисунок сделан самостоятельно с использованием программы BioRender (https://www.biorender.com)
Figure 1. The structure of the p53 protein
TAD1 – transactivation domain 1; TAD2 – transactivation domain 2; PRD – proline-rich domain; DBD – DNA binding domain; TD – tetramerization domain; RD – regulation domain. The figure was created by the authors using the BioRender software (https://www.biorender.com)
Мутации и делеции гена TP53 обнаруживаются более чем в 50% злокачественных опухолей человека (рисунок 2). Утрата функции белка p53 дает опухолевым клеткам преимущество в выживании, позволяя обходить разрешение онкогенных сигналов и повреждений ДНК для продолжения аномальной пролиферации. Модели с нокаутным геном TP53 у мышей демонстрируют крайне высокую частоту спонтанных злокачественных новообразований, что согласуется с ключевой ролью p53 как гена-супрессора опухолей [21].
Рисунок 2. Частота мутаций TP53 при различных опухолях [19]
Figure 2. The frequency of TP53 mutations in various tumors [19]
Варианты мутаций гена TP53 в зависимости от происхождения
В зависимости от происхождения патогенные варианты в гене TP53 могут подразделяться на 4 основные группы:
- герминальные (СЛФ) – варианты, образующиеся на этапе формирования зиготы; представлены во всех тканях с аллельной нагрузкой 50%; частота герминальных мутаций de novo составляет 20–10% [27, 28];
- мозаичные – варианты, возникающие в постзиготный период, представлены различным соотношением нормальных и мутантных копий гена во всех тканях [29];
- соматические – варианты, ограниченные исключительно опухолевой тканью;
- клональный гемопоэз неопределенного потенциала (clonal hematopoiesis of indeterminate potential) – вариант соматических мутаций, возникающих под действием экзогенных и эндогенных факторов в гемопоэтических клетках в отсутствие значимых клинических цитопений и диагностируемого гематологического злокачественного заболевания [30].
Большинство патогенных мутаций (80–90%) сосредоточены в пределах DBD (экзоны 5–8) и представлены однонуклеотидными миссенс-заменами, приводящими к экспрессии дефектного белка, который не способен к специфическому связыванию с консенсусной последовательностью ДНК [31, 32]. Остальные варианты встречаются реже, представлены в таблице 1 [19, 32, 33].
Таблица 1. Классификация мутаций гена TP53 по функциональному эффекту
Table 1. Classification of TP53 gene mutations by functional effect
Тип мутации Mutation type | % | Влияние на белок p53 Effect on p53 protein |
Миссенс (чаще всего в DBD; кодоны 125–300) Missense (most often in the DBD; codons 125–300) | 73–88 | Частичная/полная потеря функции Partial/complete loss of function |
Нонсенс, инделы со сдвигом рамки считывания Nonsense, frameshift indels | 10–20 | Полная потеря функции; возникновение преждевременного стоп-кодона, приводящее к усеченному или аномальному белку Complete loss of function; occurrence of a premature stop codon, resulting in a truncated or abnormal protein |
Варианты в области сайта сплайсинга Splice site variants | 2,5–5 | Возникновение аномального белка, нонсенс-опосредованный распад Abnormal protein production, nonsense-mediated degradation |
Большие делеции/инсерции Large deletions/insertions | < 5 | Полная потеря функции Complete loss of function |
Синонимичная или инфрейм-мутация Synonymous or inframe mutation | < 2 | Минимальное влияние Minimal impact |
Корреляции генотипа с фенотипом
Корреляции генотипа с фенотипом, определяемые функциональной активностью белка p53, представляют одно из ключевых направлений современных исследований при СЛФ [5, 34]. В работе Bougèard и соавт. продемонстрировано, что ряд миссенс-мутаций в гене TP53 оказывают доминантно-негативный эффект на дикую форму р53 путем формирования гетеротетрамерного комплекса, приводя к ингибированию транскрипционной активности последнего. Доминантно-негативные миссенс-варианты и варианты с полной потерей функции (loss-of-function; нулевые варианты) ассоциированы с ранней манифестацией [3]. Исследование Montellier и соавт. подтвердило эффективность такого кластерного анализа функциональных характеристик TP53-вариантов для прогнозирования пенетрантности и онкологического спектра при СЛФ [34]. Клиническая аннотация вариантов в сочетании с обновленными функциональными данными позволит стратифицировать варианты TP53 на варианты высокого и низкого раковых рисков и, соответственно, персонализировать рекомендации по наблюдению и лечению пациентов СЛФ.
Ряд исследований сфокусированы на определении возможных дополнительных генетических модификаторов и средовых факторов, определяющих реализацию онкологических проявлений при СЛФ. Возможно, не только внутригенные полиморфизмы TP53, но и мутации в других генах сигнального пути p53, укорочение теломер и иные генетические детерминанты определяют возраст дебюта и спектр опухолей у носителей герминальных мутаций TP53, что объясняет фенотипическую вариабельность СЛФ [35–38]. Также было показано влияние эпигенетических факторов на риск развития рака у пациентов с СЛФ [37].
Спектр классических опухолей при синдроме Ли–Фраумени
Пять типов рака составляют большинство опухолей при СЛФ: адренокортикальные карциномы, рак молочной железы, опухоли ЦНС, остеосаркомы и саркомы мягких тканей [11]. Реже встречаются колоректальный рак, рак желудка, рак легкого, меланома, рак поджелудочной железы и рак предстательной железы. Пожизненный риск рака для женщин и мужчин с классическим СЛФ составляет 90% и 70% соответственно, причем 50% опухолей развиваются до 40 лет [2, 3, 6, 11].
У пациентов с СЛФ развитие злокачественных новообразований имеет выраженный возраст-зависимый характер. В детском возрасте (0–15 лет) преобладают адренокортикальная карцинома (30%), карцинома сосудистого сплетения (27%), рабдомиосаркома (23%) и опухоли ЦНС (высоко злокачественные глиомы, эпeндимомы, медуллобластомы, 26%). В переходный период от детства к молодому возрасту чаще диагностируются остеосаркома, лейкозы и глиомы. В раннем взрослом возрасте (16–50 лет) основными являются рак молочной железы (79% женщин), злокачественные опухоли желудочно-кишечного тракта, рак легкого и различные саркомы мягких тканей и костей (27%). В позднем взрослом возрасте (51–80 лет) преимущественно встречаются рак поджелудочной железы и рак предстательной железы [2, 4, 6, 11, 39].
Классические критерии синдрома Ли–Фраумени и критерии Шомпре
До момента активного внедрения молекулярно-генетических методов диагностики в рутинную практику клиническими критериями установления диагноза СЛФ были так называемые классические критерии, предложенные Фредериком П. Ли и Джозефом Ф. Фраумени в 1969 г. при первоначальном описании синдрома и уточненные в их ключевой работе 1988 г. [12, 13] (таблица 2). По мере понимания фенотипической вариабельности спектра опухолей при СЛФ расширялись клинические показания к тестированию гена TP53. В результате в 2001 г. французской исследовательской группой во главе с J. Chompret были разработаны новые клинические критерии (критерии Шомпре) постановки диагноза СЛФ, впоследствии пересмотренные в 2009 и 2015 гг. (таблица 2) [13, 14]. Сочетание использования классических критериев совместно с критериями Шомпре позволяет достичь чувствительности 95% и специфичности 52% для выявления пациентов с СЛФ [6, 11].
Таблица 2. Классические критерии СЛФ и современные критерии Шомпре, их чувствительность и специфичность
Table 2. Classic criteria for Li–Fraumeni Syndrome (LFS) and modern Chompret criteria, their sensitivity and specificity
Критерий Criteria | Классические критерии СЛФ (1969/1988) Classic criteria for LFS (1969/1988) | Критерии Шомпре (2015) Chompret criteria (2015) |
Пробанд Proband | Саркома в возрасте < 45 лет Sarcoma, < 45 years | 1. Опухоль спектра СЛФ (рак молочной железы, саркома мягких тканей, остеосаркома, опухоль ЦНС, адренокортикальная карцинома) в возрасте < 46 лет + родственник с СЛФ-опухолью в возрасте < 56 лет 1. Tumor of the LFS spectrum (breast cancer, soft tissue sarcoma, osteosarcoma, CNS tumor, adreno cortical carcinoma) in individuals under 46 years of age + a relative with an LFS tumor under 56 years of age или or 2. Множественные первичные опухоли (за исключением множественных опухолей молочной железы), 2 из которых относятся к спектру СЛФ, первая развивается до 46 лет 2. Multiple primary tumors (excluding multiple breast tumors), two of which are within the LFS spectrum, with the first developing before 46 years или or 3. Редкие виды опухолей (аденокортикальная карцинома, карцинома сосудистого сплетения, рабдомиосаркома, эмбриональный анапластический подтип) 3. Rare types of tumors (adrenocortical carcinoma, choroid plexus carcinoma, rhabdomyosarcoma, embryonal anaplastic subtype) или or 4. Рак груди в возрасте < 31 года 4. Breast cancer under the age of 31 |
Родственники I степени родства (родитель, брат/сестра, ребенок) First-degree relatives (parent, sibling, child) | Любой рак в возрасте < 45 лет Any cancer < 45 years | Опухоль спектра СЛФ в возрасте < 56 лет или множественные опухоли LFS spectrum tumor < 56 years or multiple tumors |
Родственники II степени родства (дедушка/бабушка, дядя/тетя, племянник/племянница, внук) Second-degree relatives (grandfather/grandmother, uncle/aunt, nephew/niece, grandchild) | Любой рак в возрасте < 45 лет или саркома в любом возрасте Any cancer under the age of 45 or sarcoma at any age | Опухоль спектра СЛФ в возрасте < 56 лет или множественные опухоли LFS spectrum tumor < 56 years or multiple tumors |
Выполняемость Feasibility | Все 3 пункта должны присутствовать All 3 points must be present | Тестирование на герминальные варианты TP53 рекомендуется при наличии любого из перечисленных пунктов в строке «Пробанд» Testing for germline TP53 variants is recommended if any of the points listed in the “Proband” row are present |
Чувствительность Sensitivity | ~ 50–60% | ~ 95% (в комбинации с классическими) ~ 95% (in combination with classic) |
Специфичность Specificity | ~ 80% | ~ 52% (в комбинации с классическими) ~ 52% (in combination with classic) |
В 2020 г. Европейской референсной сетью по редким наследственным опухолям (European Reference Network on Genetic Tumour Risk Syndromes, ERN GENTURIS) для охвата разнообразия фенотипического спектра СЛФ был предложен термин более широкого наследственного TP53-ассоциированного опухолевого синдрома (heritable TP53-related cancer syndrome, hTP53rc syndrome) [6]. Помимо критериев Шомпре в настоящий момент считаются обоснованными показания к тестированию гена TP53 при ОЛЛ с гиподиплоидным кариотипом у детей и подростков, медуллобластоме с активацией пути Sonic Hedgehog, остеосаркоме челюсти, а также при второй первичной опухоли в зоне предшествующей лучевой терапии по поводу классической TP53-ассоциированной опухоли, возникшей до 46-летнего возраста, что отражено в последних рекомендациях Американской ассоциации онкологов (National Comprehensive Cancer Network, NCCN) [6, 11, 39].
Гематологические злокачественные новообразования при синдроме Ли–Фраумени
Риск развития лейкоза у пациентов с СЛФ в 6 раз превышает соответствующий показатель в общей популяции, однако ГЗН составляют 4–12% в структуре опухолей при СЛФ [8]. Спектр ГЗН при СЛФ в большей степени представлен ВП-ОЛЛ с низкогиподиплоидным кариотипом, лимфомами, вторичными МДС/ОМЛ; остальные варианты – единичными случаями. Распределение ГЗН при СЛФ демонстрирует возрастную зависимость (рисунок 3): ОЛЛ и лимфомы как первичное проявление СЛФ чаще возникают в первые два десятилетия жизни, в то время как вторичные МДС/ОМЛ, развивающиеся после цитотоксической терапии, характерны для более старшего возраста [3, 7].
Рисунок 3. Спектр ГЗН, распределение по возрасту, статусу предшествующей терапии у пациентов с СЛФ [7]
Figure 3. Spectrum of hematologic malignancies (HM), distribution by age, by previous therapy status in patients with LFS [7]. ALL – acute lymphoblastic leukemia; MDS – myelodysplastic syndromes; AML – acute myeloblastic leukemia
Низкогиподиплоидный острый лимфобластный лейкоз из В-клеточных предшественников у детей
Варианты с гиподиплоидным набором хромосом составляют до 5% всех случаев ВП-ОЛЛ у детей, данная подгруппа дополнительно стратифицируется в зависимости от степени анеуплоидии:
- окологаплоидный вариант (24–31 хромосома);
- низкая гиподиплоидия (32–39 хромосом);
- высокая гиподиплоидия (40–44 хромосомы) [10].
Клинически гиподиплоидный вариант ВП-ОЛЛ у детей характеризуется поздним возрастом дебюта (средняя медиана 15,5 лет против 7,3 года в общей структуре ВП-ОЛЛ), низким уровнем лейкоцитов и худшей выживаемостью в сравнении с другими генетическими подгруппами ВП-ОЛЛ у детей [10, 39]. Бессобытийная выживаемость пациентов, получавших терапию по протоколу ALL-МВ 2015, составила 56 ± 15% против 72 ± 8% (p < 0,0001), общая выживаемость – 49 ± 18% против 90 ± 1% (p < 0,0001), а кумулятивная частота рецидива – 36,1 ± 15% против 22,3 ± 8,1% в контрольной группе соответственно [40]. Наибольший риск развития рецидива наблюдался в группе, объединяющей пациентов с окологаплоидным набором хромосом и низкой гиподиплоидией (26–39 хромосом; 52,9 ± 14,4%), бессобытийная выживаемость в этой группе составила 36 ± 13%. В настоящее время пациенты с ВП-ОЛЛ и гиподиплоидией стратифицируются на интенсивную ветвь терапии [41].
ВП-ОЛЛ с низкогиподиплоидным кариотипом является высокоспецифичным для СЛФ [10, 39]. Данная цитогенетическая подгруппа характеризуется модальным числом хромосом 32–39, часто отмечается удвоение числа хромосом, маскирующееся под диплоидный или гипердиплоидный кариотип [40, 42]. Характер анеуплоидии при низкогиподиплоидном ОЛЛ не является случайным и демонстрирует постоянство в теряемых и сохраняемых хромосомах. При низкой гипоплоидии хромосомы 3, 12, 13, 16, 17 почти всегда теряются, часто отсутствуют также хромосомы 2, 4, 7, 9, 15 и 20. Хромосомы 5, 8, 14, 18, 19, 22, X и Y редко теряются, тогда как хромосома 21 сохраняется всегда [10]. Удвоение числа хромосом в гиподиплоидном клоне приводит к диагностическим сложностям при установлении данного варианта ВП-ОЛЛ, что требует дополнительных методов: определение ДНК-индекса, который может показать пики, представляющие как маскированные, так и немаскированные клоны; анализ данных однонуклеотидных полиморфизмов (single nucleotide polymorphism), при котором выявляется потеря гетерозиготности (loss of heterozygosity) в формально диплоидных хромосомах, свидетельствующих о моносомии с последующей редупликацией [10, 42].
Наличие рекуррентных транслокаций, характерных для спорадических ВП-ОЛЛ, не является типичным при СЛФ. Однако в исследовании Winter и соавт. описаны 2 пациента c СЛФ с BCR::ABL и ETV6::RUNX1, что свидетельствует о крайней редкости, но не абсолютном отсутствии таких генетических событий при ОЛЛ, ассоциированных с СЛФ [43].
Исследование Holmfeldt и соавт. подтвердило актуальность используемой цитогенетической классификации гипоплоидного ОЛЛ, поскольку случаи низкогипоплоидного (32–39 хромосом) и окологаплоидного (24–31 хромосома) вариантов имеют различные транскриптомные профили и паттерны генетических изменений, что позволяет рассматривать их как отдельные нозологические формы [44]. Мутационный профиль низкогиподиплоидного ОЛЛ характеризуется частыми мутациями гена транскрипционного фактора IKZF2 (65% случаев), делецией гена-супрессора RB1 (41% случай), аберрациями генов CDKN2A/CDKN2B (23,5%), низкой частотой мутаций сигнального пути Ras (9%) [10, 44, 45].
Мутации в гене TP53 обнаруживаются в 91% случаев низкогиподиплоидного ВП-ОЛЛ против 8% от всех пациентов с гипоплоидией [10]. При этом большинство из них имеют биаллельную инактивацию гена ТР53 за счет потери аллеля дикого типа [46]. Мутации демонстрируют преимущественную кластеризацию в пределах DBD. Хотя есть исследования, показывающие, что потеря функции TP53 ассоциирована с геномной нестабильностью и развитием анеуплоидии при некоторых видах опухолей [46–48], несколько наблюдений свидетельствуют о том, что мутации TP53 при гиподиплоидном ВП-ОЛЛ не приводят к геномной нестабильности. Во-первых, низкогиподиплоидный ВП-ОЛЛ не обладает такой выраженной анеуплоидией, как окологаплоидный вариант, при котором редко отмечаются мутации гена TP53. Это предполагает, что другие механизмы, отличные от инактивации гена TP53, приводят к анеуплоидии. Во-вторых, при низкогиподиплоидном ВП-ОЛЛ отсутствуют признаки хромотрипсиса, нет множественных разрывов и структурных перестроек хромосом [49]. В целом геном при низкогиподиплоидном ВП-ОЛЛ относительно стабилен и демонстрирует воспроизводимый паттерн анеуплоидии, который сохраняется при рецидиве. Ксенографтные модели низкогиподиплоидного ВП-ОЛЛ сохраняют этот паттерн анеуплоидии и мутаций даже после последовательных пассажей [50]. Таким образом, хотя мутации TP53 являются ключевым компонентом патогенеза низкогиподиплоидного ВП-ОЛЛ, функциональная роль этих изменений остается неясной [10].
В исследовании Comeaux и соавт. показано, что в 43% случаев мутации в гене ТР53 при низкогиподиплоидном ВП-ОЛЛ носили герминальный характер, тогда как в исследованиях в когорте взрослых пациентов был показан преимущественно их соматический характер [10]. С 2021 г. NCCN включила низкогиподиплоидный ВП-ОЛЛ у детей в критерии скрининга СЛФ [11, 39]. Идентификация таких пациентов и своевременное распознавание членов семьи носителей мутаций гена TP53 позволяет подобрать подходящих доноров для трансплантации стволовых клеток, внедрять программы скрининга.
Миелодиспластический синдром/острый миелоидный лейкоз
МДС/ОМЛ у пациентов с СЛФ наиболее часто развиваются после предшествующей цитотоксической терапии, что было показано в многочисленных исследованиях [7–9, 11]. В исследовании Vagher и соавт. проведен наиболее объемный анализ собственных (19 пациентов) и метаанализ литературных данных (250 пациентов) с СЛФ из 121 семьи. В работе описаны 28 случаев развития ГЗН после предшествующей химиотерапии, из них МДС/ОМЛ составили 79% (n = 22) с медианным возрастом 33 года (диапазон – 4–78 лет) [7]. Медианное время развития вторичных МДС/ОМЛ крайне вариабельно, по разным исследованиям, составляет от 24 до 111 мес [9, 51, 52]. Данная группа пациентов характеризуется крайне неблагоприятным прогнозом даже при трансплантации костного мозга [37, 53]. Общая выживаемость от момента диагностики первого злокачественного новообразования составляет 198,0 мес (16,5 лет), а от момента диагностики гематологического новообразования – 28,8 мес (~ 2,4 года) [9].
При цитогенетическом исследовании вторичных МДС/ОМЛ, ассоциированных с СЛФ, обнаруживаются характерные комплексные хромосомные перестройки (3 аберрации и более) с частым вовлечением хромосом 5, 7, 17 (потеря целой хромосомы 17, делеция короткого плеча 17p, что в сочетании с герминальными мутациями в гене ТР53 приводит к биаллельной инактивации р53) [9, 52]. При МДС/ОМЛ, ассоциированными с мутациями TP53, часто отмечается явление хромотрипсиса – процесс массивной одномоментной фрагментации одной или нескольких хромосом на множество мелких участков с последующей случайной сборкой в измененном порядке [54, 55]. M. Cazzola и соавт. при культивировании клеточных линий с дефицитом р53 продемонстрировали большое количество структурных и численных хромосомных аномалий, подчеркивая роль р53 в поддержании геномной стабильности. Тем не менее остается неясным, является ли геномная дестабилизация прямым следствием мутаций в TP53 или же она обусловлена апоптоз-резистентностью мутантных клеток с вторичным накоплением хромосомных дефектов либо данные механизмы сосуществуют [56].
Таким образом, при синдроме СЛФ два наиболее частых ГЗН – низкогиподиплоидный BП-ОЛЛ и МДС/ОМЛ – демонстрируют принципиально противоположные геномные фенотипы, несмотря на общую основу в мутациях TP53. Однозначного объяснения данного феномена в настоящий момент нет.
Неходжкинские лимфомы
Неходжкинские лимфомы (НХЛ) встречаются при СЛФ значительно реже и представлены различными подтипами: диффузной B-клеточной крупноклеточной лимфомой, лимфомой зоны мантии, лимфомой Беркитта, плазмобластной лимфомой (как посттрансплантационное лимфопролиферативное заболевание), фолликулярной лимфомой [3, 7, 8, 11]. Отмечается некоторое превалирование лимфом у детей относительно взрослых (3% и 1% соответственно) [3]. В связи с отсутствием когортных исследований пациентов с НХЛ при СЛФ оценить особенности клинического течения и прогноз затруднительно. Однако известно, что соматические мутации в TP53 при НХЛ описаны как независимый прогностически неблагоприятный маркер [57]. Анализ когорты пациентов, получавших терапию по российскому протоколу В-НХЛ-2010М, показал, что 5-летняя бессобытийная и общая выживаемость у пациентов с мутацией в гене ТР53 и без нее составили 45,3% (95% доверительный интервал (ДИ) 21–69,6) и 97,9% (95% ДИ 93,9–100) соответственно (р < 0,001) и 47,1% (95% ДИ 21,8–72,4) и 97,9% (95% ДИ 93,9–100) соответственно (р < 0,001) [53].
Другие варианты ГЗН описаны как единичные случаи и были представлены хроническим лимфоцитарным лейкозом, множественной миеломой, гистиоцитозом из клеток Лангерганса, лимфомой Ходжкина, хроническим миелолейкозом, T-клеточным пролимфоцитарным лейкозом [3, 7, 8, 11].
Основные протоколы наблюдения при синдроме Ли–Фраумени
На сегодняшний день регулярные программы скрининга являются единственным компонентом ведения СЛФ, достоверно приводящим к улучшению прогноза за счет раннего выявления опухолей и, соответственно, снижения смертности. По данным A. Villani и соавт., применение программ скрининга способствует увеличению 5-летней выживаемости до 88,8% по сравнению с 59,6% в группе без соответствующего наблюдения [58, 59]. В настоящее время применяются протоколы наблюдения для пациентов с герминальными мутациями гена TP53, разработанные различными исследовательскими группами: Toronto Protocol [59], LFSA (Li–Fraumeni Syndrome Association)/AACR (American Association for Cancer Research Protocol [60], ERN GENTURIS Guidelines [6], рекомендации NCCN [57]. Ключевым элементом скрининговых программ во всех протоколах является ежегодная магнитно-резонансная томография всего тела для раннего выявления солидных опухолей. Общий анализ крови как метод ранней диагностики ГЗН каждые 3–4 мес не продемонстрировал эффективности у пациентов с СЛФ [61]. Однако, учитывая риск развития вторичных ГЗН у пациентов, получивших химио- и лучевую терапию, целесообразно проводить контроль результатов общего анализа крови в рамках ежегодных скрининговых исследований.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
СЛФ традиционно ассоциируется с повышенным риском солидных опухолей. Однако современные данные свидетельствуют, что ГЗН развиваются у 12% пациентов с СЛФ, нередко как первое клиническое проявление заболевания, особенно в детском и подростковом возрасте. ГЗН при СЛФ характеризуется преимущественно гиподиплоидным ВП-ОЛЛ и МДС/ОМЛ, ассоциированными с терапией, но также встречаются индолентные и агрессивные лимфомы, множественные миеломы и Т-клеточные злокачественные заболевания. Неблагоприятный прогноз ГЗН, ассоциированных с мутациями гена TP53, необходимость выбора донора в декретированные сроки подчеркивают необходимость раннего выявления пациентов с СЛФ в онкогематологии.
ВКЛАД АВТОРОВ
Авторы внесли равнозначный вклад.
AUTHOR CONTRIBUTIONS
The authors contributed equally to the work.
ИСТОЧНИК ФИНАНСИРОВАНИЯ
Не указан.
FUNDING
Not specified.
КОНФЛИКТ ИНТЕРЕСОВ
Авторы статьи подтвердили отсутствие конфликта интересов, о котором необходимо сообщить.
CONFLICT OF INTEREST
The authors confirm that there is no conflict of interest to declare.
About the authors
A. N. Kazakova
The Dmitry Rogachev National Medical Research Center of Pediatric Hematology, Oncology and Immunology of Ministry of Healthcare of the Russian Federation
Author for correspondence.
Email: anna.kazakova@dgoi.ru
ORCID iD: 0000-0002-1085-4646
MD in Clinical Laboratory Medicine, Deputy Head of the Laboratory of Cytogenetics and Molecular Genetics
Russian Federation, MoscowA. B. Itov
The Dmitry Rogachev National Medical Research Center of Pediatric Hematology, Oncology and Immunology of Ministry of Healthcare of the Russian Federation
Email: anna.kazakova@dgoi.ru
ORCID iD: 0000-0003-0098-919X
Russian Federation, Moscow
References
- Orphanet: Li–Fraumeni syndrome [Electronic resource]. URL: https://www.orpha.net/en/disease/ detail/524?mode = name&name = LiFraumeni%20syndrome (accessed 13.12.2025).
- Schneider K., Zelley K., Nichols K. E., Schwartz Levine A., Garber J. Li–Fraumeni syndrome. GeneReviews® Adam M.P., Bick S., Mirzaa G.M., Pagon R.A., Wallace S.E., Amemiya A. (eds.). Seattle (WA). University of Washington, Seattle, 1993.
- Bougeard G., Renaux-Petel M., Flaman J.-M., Charbonnier C., Fermey P., Belotti M., et al. Revisiting Li–Fraumeni syndrome from TP53 mutation carriers. J Clin Oncol 2015;33(21): 2345–52.
- De Andrade K.C., Khincha P.P., Hatton J.N., Frone M.N., Wegman-Ostrosky T., Mai P.L. et al. Cancer incidence, patterns, and genotype–phenotype associations in individuals with pathogenic or likely pathogenic germline TP53 variants: an observational cohort study. Lancet Oncol 2021;22(12): 1787–98.
- Penkert J., Strüwe F.J., Dutzmann C.M., Doergeloh B.B., Montellier E., Freycon C. et al. Genotype-phenotype associations within the Li–Fraumeni spectrum: a report from the German Registry. J Hematol Oncol 2022;15(1):107.
- Frebourg T., Bajalica Lagercrantz S., Oliveira C., Magenheim R., Evans D.G. Guidelines for the Li–Fraumeni and heritable TP53-related cancer syndromes. Eur J Hum Genet 2020;28(10):1379–86.
- Vagher J., Zakas A., Donovan L., Shoger K., Naumer A., Bly J. et al. Hematologic Malignancy frequency, phenotypes, and outcomes in Li–Fraumeni syndrome. JCO Precis Oncol 2025;9:e2400860.
- Fiala E., Breen K., Kennedy J., Abbass M., Carlo M., Liu Y. et al. Spectrum, molecular features, and clinical outcomes of hematologic malignancies and clonal hematopoiesis in Li–Fraumeni syndrome. Blood 2025;146(Suppl 1):3220.
- Dimopoulos Y.P., Wang W., Wang S.A., Loghavi S., DiNardo C.D., Gerstein Y. et al. The spectrum of hematologic neoplasms in patients with Li–Fraumeni syndrome. Am J Hematol 2024;99(12):2416–9.
- Comeaux E.Q., Mullighan C.G. TP53 mutations in hypodiploid acute lymphoblastic leukemia. Cold Spring Harb Perspect Med 2017;7(3):a026286.
- Kratz C.P., Freycon C., Maxwell K.N., Nichols K.E., Schiffman J.D., Evans D.G. et al. Analysis of the Li–Fraumeni spectrum based on an international germline TP53 variant data set: an international agency for research on cancer TP53 database analysis. JAMA Oncol 2021;7(12):1800–5.
- Li F.P., Fraumeni J.F. Soft-tissue sarcomas, breast cancer, and other neoplasms. A familial syndrome? Ann Intern Med 1969;71(4):747–52.
- Li F.P., Fraumeni J.F., Mulvihill J.J., Blattner W.A., Dreyfus M.G., Tucker M.A. et al. A cancer family syndrome in twenty-four kindreds. Cancer Res 1988;48(18):5358–62.
- Malkin D., Li F.P., Strong L.C., Fraumeni J.F., Nelson C.E., Kim D.H. et al. Germline p53 mutations in a familial syndrome of breast cancer, sarcomas, and other neoplasms. Science 1990;250(4985): 1233–8.
- Yonish-Rouach E., Resnitzky D., Lotem J., Sachs L., Kimchi A., Oren M. Wild-type p53 induces apoptosis of myeloid leukaemic cells that is inhibited by interleukin-6. Nature 1991;352(6333):345–7.
- Lane D.P. Cancer. p53, guardian of the genome. Nature 1992;358(6381):15–6.
- Kastenhuber E.R., Lowe S.W. Putting p53 in context. Cell 2017;170(6):1062–78.
- Boutelle A.M., Attardi L.D. p53 and tumor suppression: it takes a network. Trends Cell Biol 2021;31(4):298–310.
- Wang H., Guo M., Wei H., Chen Y. Targeting p53 pathways: mechanisms, structures and advances in therapy. Signal Transduct Target Ther. 2023;8(1):92.
- Han C.W., Lee H.N., Jeong M.S., Park S.Y., Jang S.B. Structural basis of the p53 DNA binding domain and PUMA complex. Biochem Biophys Res Commun. 2021;548:39–46.
- Sullivan K.D., Galbraith M.D., Andrysik Z., Espinosa J.M. Mechanisms of transcriptional regulation by p53. Cell Death Differ 2018;25(1):133–43.
- Walker K.K., Levine A.J. Identification of a novel p53 functional domain that is necessary for efficient growth suppression. Proc Natl Acad Sci 1996;93(26):15335–40.
- Weinberg R.L., Veprintsev D.B., Fersht A.R. Cooperative binding of tetrameric p53 to DNA. J Mol Biol 2004;341(5):1145–59.
- Laptenko O., Tong D.R., Manfredi J., Prives C. The Tail that wags the dog: how the disordered C-terminal domain controls the transcriptional activities of the p53 tumor-suppressor protein. Trends Biochem Sci 2016;41(12):1022–34.
- Retzlaff M., Rohrberg J., Küpper N.J., Lagleder S., Bepperling A., Manzenrieder F. et al. The regulatory domain stabilizes the p53 tetramer through intersubunit contacts with the DNA-binding domain. J Mol Biol 2013;425(1):144–55.
- Hernández Borrero L.J., El-Deiry W.S. Tumor suppressor p53: biology, signaling pathways, and therapeutic targeting. Biochim Biophys Acta Rev Cancer 2021;1876(1):188556.
- Chompret A., Brugières L., Ronsin M., Gardes M., Dessarps-Freichey F., Abel A. et al. P53 germline mutations in childhood cancers and cancer risk for carrier individuals. Br J Cancer 2000;82(12):1932–7.
- Correa H. Li–Fraumeni syndrome. J Pediatr Genet 2016;5(2):84–8.
- Ward A., Farengo-Clark D., McKenna D.B., Safonov A., Good M., Le A. et al. Clinical management of TP53 mosaic variants found on germline genetic testing. Cancer Genet 2024;284–285:43–7.
- Castillo D., Yuan T.-A., Nehoray B., Cervantes A., Tsang K.K., Yang K. et al. Clonal hematopoiesis and mosaicism revealed by a multi-tissue analysis of constitutional TP53 status. Cancer Epidemiol Biomark Prev 2022;31(8):1621–9.
- Tornesello M.L. TP53 mutations in cancer: molecular features and therapeutic opportunities (review). Int J Mol Med 2024;55(1):7.
- The TP53 database [Electronic resource]. URL: https://tp53.cancer.gov/ (accessed 02.01.2026).
- Olivier M., Hollstein M., Hainaut P. TP53 mutations in human cancers: origins, consequences, and clinical use. Cold Spring Harb Perspect Biol 2010;2(1):a001008.
- Montellier E., Lemonnier N., Penkert J., Freycon C., Blanchet S., Amadou A. et al. Clustering of TP53 variants into functional classes correlates with cancer risk and identifies different phenotypes of Li–Fraumeni syndrome. iScience 2024;27(12):111296.
- Ruijs M.W.G., Schmidt M.K., Nevanlinna H., Tommiska J., Aittomäki K., Pruntel R. et al. The single-nucleotide polymorphism 309 in the MDM2 gene contributes to the Li–Fraumeni syndrome and related phenotypes. Eur J Hum Genet 2007;15(1):110–4.
- Tabori U., Nanda S., Druker H., Lees J., Malkin D. Younger age of cancer initiation is associated with shorter telomere length in Li–Fraumeni syndrome. Cancer Res 2007;67(4): 1415–8.
- Lee J.W. Li–Fraumeni syndrome: current strategies and future perspectives. J Korean Neurosurg Soc 2025;68(3):305–10.
- Montellier E., Manches O., Gaucher J., Freycon C., Hoyos D., Blanchet S. et al. Neoantigenic properties of TP53 variants influence cancer risk in individuals with Li–Fraumeni syndrome. eBioMedicine 2026;123:106065.
- Guidelines detail [Electronic resource]. NCCN URL: https://www.nccn.org/guidelines/guidelines-detail?category = 2&id = 1545 (accessed 06.01.2026).
- Carroll A.J., Shago M., Mikhail F.M., Raimondi S.C., Hirsch B.A., Loh M.L. et al. Masked hypodiploidy: hypodiploid acute lymphoblastic leukemia (ALL) mimicking hyperdiploid ALL in children: a report from the children’s oncology group. Cancer Genet 2019;238:62–8.
- Ольшанская Ю.В., Солдаткина О.И., Никитин Е.Н., Тимофеева Н.М., Казакова А.Н., Быданов О.И. и др. Гиподиплоидный кариотип при острых лимфобластных лейкозах из В-линейных предшественников у детей. Вопросы гематологии/онкологии и иммунопатологии в педиатрии. 2021;20(2):97–110. [Olshanskaya Yu.V., Soldatkina O.I., Nikitin E.N., Timofeyeva N.M., Kazakova A.N., Bydanov O.I. et al. A hypodiploid karyotype in childhood B-cell precursor acute lymphoblastic leukemia. Pediatric Hematology/Oncology and Immunopathology 2021;20(2):97–110 (In Russ.)].
- Harrison C.J., Moorman A.V., Broadfield Z.J., Cheung K.L., Harris R.L., Reza Jalali G. et al. Three distinct subgroups of hypodiploidy in acute lymphoblastic leukemia. Br J Haematol 2004;125(5):552–9.
- Winter G., Kirschner-Schwabe R., Groeneveld-Krentz S., Escherich G., Möricke A., von Stackelberg A. et al. Clinical and genetic characteristics of children with acute lymphoblastic leukemia and Li–Fraumeni syndrome. Leukemia 2021;35(5): 1475–9.
- Holmfeldt L., Wei L., Diaz-Flores E., Walsh M., Zhang J., Ding L. et al. The genomic landscape of hypodiploid acute lymphoblastic leukemia. Nat Genet 2013;45(3):242–52.
- Mühlbacher V., Zenger M., Schnittger S., Weissmann S., Kunze F., Kohlmann A. et al. Acute lymphoblastic leukemia with low hypodiploid/near triploid karyotype is a specific clinical entity and exhibits a very high TP53 mutation frequency of 93%. Genes Chromosomes Cancer 2014;53(6):524–36.
- Donehower L.A., Soussi T., Korkut A., Liu Y., Schultz A., Cardenas M. et al. Integrated analysis of TP53 gene and pathway alterations in the cancer genome atlas. Cell Rep 2019;28(5):1370–84.e5.
- Hanel W., Moll U.M. Links between mutant p53 and genomic instability. J Cell Biochem 2012;113(2):433–9.
- Thompson S.L., Compton D.A. Proliferation of aneuploid human cells is limited by a p53-dependent mechanism. J Cell Biol 2010;188(3): 369–81.
- Jones M.J.K., Jallepalli P.V. Chromothripsis: chromosomes in crisis. Dev Cell 2012;23(5):908–17.
- Holmfeldt L., Mullighan C.G. Generation of human acute lymphoblastic leukemia xenografts for use in oncology drug discovery. Curr Protoc Pharmacol 2015;68(1):14. 32.1–19.
- Swaminathan M., Bannon S.A., Routbort M., Naqvi K., Kadia T.M., Takahashi K. et al. Hematologic malignancies and Li–Fraumeni syndrome. Mol Case Study 2019;5(1):a003210.
- p53 biology and reactivation for improved therapy in MDS and AML – PMC [Electronic resource]. URL: https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC10936007/ (accessed 06.01.2026).
- Волчков Е.В., Абугова Ю.Г., Бренинг К.Р., Абрамов Д.С., Фоминых В.В., Сенченко М.А. и др. Прогностическое значение статуса гена TP53 у детей с лимфомой Беркитта на протоколе В-НХЛ-2010М. Вопросы гематологии/онкологии и иммунопатологии в педиатрии 2024;23(1):56–62. [Volchkov E.V., Abugova Yu.G., Brenning K.R., Abramov D.S., Fominykh V.V., Senchenko M.A. et al. The prognostic value of TP53 mutational status in children with Burkitt lymphoma treated according to the B-NHL-2010M protocol. Pediatric Hematology/Oncology and Immunopathology 2024;23(1):56–62. (In Russ.)].
- Molecular characterization of mutant TP53 acute myeloid leukemia and high-risk myelodysplastic syndrome – PMC [Electronic resource]. URL: https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC11022827/ (accessed 11.01.2026).
- Zhao Y., Chen W., Yu J., Pei S., Zhang Q., Sh, J, et al. TP53 in MDS and AML: biological and clinical advances. Cancer Lett 2024;588:216767.
- Cazzola A., Schlegel C., Jansen I., Bochtler T., Jauch A., Krämer A. TP53 deficiency permits chromosome abnormalities and karyotype heterogeneity in acute myeloid leukemia. Leukemia 2019;33(11):2619–27.
- Newman A.M., Zaka M., Zhou P., Blain A.E., Erhorn A., Barnard A. et al. Genomic abnormalities of TP53 define distinct risk groups of paediatric B-cell non-Hodgkin lymphoma. Leukemia 2022;36(3):781–9.
- Villani A., Tabori U., Schiffman J., Shlien A., Beyene J., Druker H. et al. Biochemical and imaging surveillance in germline TP53 mutation carriers with Li–Fraumeni syndrome: a prospective observational study. Lancet Oncol 2011;12(6): 559–67.
- Villani A., Shore A., Wasserman J.D., Stephens D., Kim R.H., Druker H. et al. Biochemical and imaging surveillance in germline TP53 mutation carriers with Li–Fraumeni syndrome: 11-year follow-up of a prospective observational study. Lancet Oncol 2016;17(9):1295–305.
- Association L.F.S. 2025 updated screening guidelines for Li–Fraumeni syndrome (LFS). LFS Assoc. 2025.
- Oba L., Best A.F., Mai P.L., Achatz M.I., Albert P.S., Savage S.A. et al. Utility of interim blood tests for cancer screening in Li–Fraumeni syndrome. Fam Cancer 2022;21(3): 333–6.
Supplementary files





