Prolonged hypogammaglobulinemia in children after allogeneic hemopoietic stem cell transplantation

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

Allogeneic hematopoietic stem cell transplantation (HSCT) is a key treatment strategy for life-threatening hematologic and immunologic diseases. Immune reconstitution after allogeneic HSCT is a complex and multistage process, which is critical to the recovery of the patient's immune function and to the reduction of the risk of infectious complications. Studies show that most patients experience a significant improvement in immune function 6-12 months after transplantation; however, a full recovery may take up to 2 years or more. One of the major complications of allogeneic HSCT is prolonged hypogammaglobulinemia - low serum immunoglobulin G levels for more than 2 years after allogeneic HSCT. In the absence of a clearly defined threshold for hypogammaglobulinemia, the generally accepted definition is a serum immunoglobulin G level below 5 g/L. Impaired antibody formation and the occurrence of prolonged hypogammaglobulinemia in children after allogeneic HSCT are complex problems that require careful monitoring and appropriate management. Timely restoration of B cell number and function is critical to reduce the risk of infectious complications and improve the quality of patients' life.

Full Text

Пролонгированная гипогаммаглобулинемия у детей, перенесших аллогенную трансплантацию гемопоэтических стволовых клеток (ТГСК), представляет собой значимую клиническую проблему. Длительное снижение уровней иммуноглобулинов (Ig) обусловливает повышенную восприимчивость к инфекционным осложнениям, что требует проведения регулярной заместительной терапии Ig и способствует увеличению частоты госпитализаций. Кроме того, дефицит гуморального иммунитета оказывает существенное влияние на социальную адаптацию пациентов, обусловливая необходимость ограничения контактов и длительного медицинского наблюдения. Таким образом, пролонгированная гипогаммаглобулинемия существенно снижает качество жизни и влияет на прогноз у детей после аллогенной ТГСК.

 

Восстановление гуморального иммунитета

Восстановление популяции В-клеток после аллогенной ТГСК происходит медленно и не всегда полноценно (рисунки 1, 2). Первые транзиторные В-клетки (CD24highCD38high) появляются приблизительно через 1,5-2 мес [1, 2]. Также на ранних сроках после ТГСК происходит экспансия CD5+ В-клеток, способных вырабатывать интерлейкин-10, который, в свою очередь, увеличивает выживаемость B-клеток, их пролиферацию и продукцию антител [3, 4]. Экспансия CD5+ B-клеток указывает на роль регуляторных В-лимфоцитов в контроле иммунных и аутоиммунных реакций [5]. Через несколько месяцев после ТГСК количество переходных В-лимфоцитов уменьшается и постепенно появляются наивные В-клетки (CD24intCD38int), которые становятся преобладающей популяцией (в течение 1 года составляют 80% популяции В-лимфоцитов периферической крови). Переходные В-клетки с функциональным В-клеточным рецептором (BCR) изотипа IgM, связанным с их клеточной мембраной, выходят из костного мозга и созревают в наивные В-клетки. Эти наивные В-клетки циркулируют в крови и проходят через фолликулы в лимфатических узлах, пока их уникальный рецептор не распознает специфический антиген, растворимый или связанный с фолликулярными дендритными клетками или макрофагами. После связывания антигена с IgM и при дополнительной помощи фолликулярных Т-клеток CD4+ В-клетки либо дифференцируются в короткоживущие экстрафолликулярные плазматические клетки или В-клетки памяти (в основном IgM-позитивные), либо инициируют ответ герминального центра внутри фолликула, который необходим для долгоживущих высокоаффинных IgA+ и IgG+ В-клеток памяти и долгоживущих плазматических клеток, производящих высокоаф­финные IgA и IgG. В герминальных центрах B-клетки подвергаются клональной экспансии, когда цитадинактивированная деаминаза (AID) экспрессируется для инициации соматического гипермутирования вариабельных цепей генов Ig. При положительной селекции В-клеток с высокой аффинностью связывания антигена рекомбинация классов Ig (V(D) J-рекомбинация) инициируется путем AID-контро­лируемых двухнитевых разрывов ДНК и последующей их репарации в консервативных мотивах в регионах переключения, расположенных перед сегментами генов, которые кодируют отдельные константные области тяжелых цепей антител. Это приводит к переключению с класса IgM на класс IgA и/или IgG [6].

 

Рисунок 1. Динамика реконституции В-клеточного звена у пациентов после ТГСК

Figure 1. The changes in the B cell reconstitution in patients after he­matopoietic stem cell transplantation

 

 

IgG (рисунок 3) играет центральную роль в противоинфекционном иммунитете благодаря таким факторам, как Рс-опосредованная антителозависимая клеточная цитотоксичность и комплемент- зависимая цитотоксичность.

 

Рисунок 2. Схема периферического развития В-клеток (А) и гипотетическая схема восстановления различных популяций В-клеток (Б): переходные В-клетки ^ наивные зрелые В-клетки ^ В-клетки памяти и плазмоциты [7]

Figure 2. Schematic representation of peripheral B-cell development (A) and hypothetical scheme of B cell subset reconstitution (Б): transitional B cells ^ mature naive B cells ^ memory B cells and plasma cells [7]

Уровень Ig восстанавливается параллельно с восстановлением В-лимфоцитов [8]. При этом нормализация подклассов Ig обычно происходит в определенном порядке [8, 9]. Первыми восстанавливаются IgM, в среднем достигают нормального уровня в течение первых 6 мес после ТГСК. IgG достигают нормальных значений ко второй половине года, в то время как нормализация IgA может занять до 5 лет после ТГСК. Подклассы IgG в среднем достигают нормальных значений в сыворотке крови в течение 5 мес (IgG1), 9 мес (IgG3) или 2 лет (IgG2 и IgG4). Однако эти сроки очень вариабельны и могут зависеть от таких факторов, как основное заболевание, источник стволовых клеток, тип донора [8-10]. Для полного восстановления В-лимфоцитов необходимо разнообразие репертуара BCR. Дифференцировка В-лимфоцитов определяется активацией и перестройкой генов, контролирующих синтез полипептидных цепей BCR [11]. У пациентов после ТГСК чаще всего несбалансированный, неполноценный репертуар BCR, что приводит к нарушению гуморального иммунитета, повышенному риску развития инфекционных и/или аутоиммунных осложнений. BCR (рисунок 4) состоит из молекулы мембранного IgM или IgD и 2 молекул CD79 (Iga и Igb), имеет транс­мембранные и цитоплазматические сегменты, пере­дающие внутриклеточные сигналы. Разнообразие BCR определяет реаранжировка генов [11].

 

Возможный патогенез пролонгированной гипо- гаммаглобулинемии

Механизмы нарушения антителообразования - переключение В-клеток на синтез Ig - остаются не до конца изученными.

К основным причинам развития пролонгированной гипогаммаглобулинемии можно отнести следующие:

  1. функциональная незрелость В-клеток - наблюдается отсутствие пролиферативных и дифференцировочных ответов на антигензависимую стимуляцию, что отражает их функциональную некомпетентность [12];
  2. повреждение предшественников В-клеток, возникающее в результате «цитокинового шторма» или применения иммуносупрессивных препаратов в терапии реакции «трансплантат против хозяина» (РТПХ) [12];
  3. повреждение стромальной ниши гемопоэтических стволовых клеток также может способствовать замедлению восстановления популяции В-клеток, что ухудшает условия для их дифференцировки и созревания, приводит к развитию гипогаммаглобулинемии [12].

Факторами риска развития пролонгированной гипогаммаглобулинемии у детей после аллогенной

 

Рисунок 3. Строение IgG

Антитела IgG состоят из 4 полипептидных цепей: 2 одинаковых тяжелых цепей типа g и 2 легких цепей, которые соединены между собой дисульфидными связями, формируя тетрамер с характерной Y-образной формой. На конце «вилки» содержат по одному сайту связывания с антиге­ном, обладающему вариабельной структурой

Figure 3. The structure of IgG

IgG antibodies consist of four polypeptide chains: two identical g-type heavy chains and two light chains linked together by disul­phide bonds forming a tetramer with a characteristic Y-shape. Each end of the 'fork' contains an antigen binding site with a variable structure

 
 

 

 

Рисунок 4. Строение BCR

Figure 4. The B cell receptor structure

ТГСК могут быть течение РТПХ, длительное применение иммуносупрессивной терапии, предшествующее введение ритуксимаба, использование тотального облучения тела в кондиционировании, CAR-T (chimeric antigen receptor)-клеточная терапия, направленная на антиген CD19 (таблица). Wudhikarn и соавт. проанализировали 60 пациентов с диффузной В-клеточной лимфомой, получавших анти-CD^ CAR-T-клеточную терапию, и сообщили, что у 44% наблюдалась гипогаммаглобулинемия (IgG < 4 г/л) через 1 мес после введения клеток и у 38% пациентов в более поздние сроки [13]. Из 24 пациентов с рецидивом/рефрактерным течением острого В-лимфобластного лейкоза в 83% случаев через 1 мес после CAR-T-клеточной терапии наблюдалась гипогаммаглобулинемия [13].

Качество жизни пациентов с пролонгированной гипогаммаглобулинемией

Пациенты с пролонгированной гипогаммаглобулинемией имеют высокую инфекционную заболеваемость, требуют проведения пожизненной регулярной заместительной терапии внутривенными или подкожными Ig. Данные о частоте повторных госпитализаций у детей с пролонгированной гипогаммаглобулине­мией после аллогенной ТГСК варьируют в зависимости от ряда факторов, включая возраст пациента, тип заболевания и наличие сопутствующих состо­яний. В некоторых исследованиях отмечается, что до 30% детей могут потребовать повторной госпитали­зации в течение первого года после трансплантации [14]. Процент смертности у детей с гипогаммаглобулинемией может достигать 27% [15]. Norlin и соавт. провели ретроспективный анализ, по результатам которого оказалось, что у пациентов с низким уровнем IgG (< 4 г/л) общая выживаемость составляла 54%, а смертность - 27% [16]. Frangoul и соавт. проанализировали распространенность и факторы риска развития гипогаммаглобулинемии у детей и сообщили, что снижение уровня IgG < 5 г/л встречалось у 77% пациентов [17]. Факторами риска были инициально низкий уровень Ig до ТГСК, маленький возраст пациентов на момент трансплантации, основное злокачественное заболевание, развитие острой РТПХ, ТГСК от неродственного донора.

 

Вакцинация

Для полноценного восстановления защиты от инфекций после аллогенной ТГСК требуется обязательное проведение полного комплекса вакцинации, так как после трансплантации возникает функциональная аспления, а эффект вакцин, введенных до ТГСК,нивелирован кондиционированием.

Ответ на вакцинацию у детей после аллогенной ТГСК зависит от восстановления как Т-клеточного, так и В-клеточного звена [18]. Исключением явля­ется реакция на полисахаридные антитела, которая полностью зависит от В-клеток. Ответ на полисахаридные антитела играет роль в иммунизации против инкапсулированных бактерий (пневмококки) [19-22]. Риск пневмококкового инвазивного заболевания повышен как в ранние, так и в поздние сроки после ТГСК, что свидетельствует о длительных дефектах в восстановлении В-клеток даже после ревакцинации [23-26]. Предполагается, что плохой ответ на поли­сахаридные вакцины вызван дефектом В-клеток памяти, продуцирующих IgM [27].

Вакцинацию аттенуированными вакцинами следует начинать не ранее чем через 6 мес после аллогенной ТГСК, при этом должен быть достаточный уровень CD4 (200 кл/мкл) и CD19 (50 кл/мкл). Вакцинацию «живыми» вакцинами следует проводить спустя 2 года после ТГСК (в отсутствие активных проявлений РТПХ).

 

Таблица. Факторы, влияющие на восстановление В-лимфоцитов [7]

Table. Factors influencing B cell reconstitution [7]

Фактор

Factor

Влияние

Influence

Источник стволовых клеток

Stem cell source

Периферические стволовые клетки - количество В-клеток выше на ранних этапах, однако спустя 6 мес после ТГСК уровни В-лимфоцитов одинаковые, независимо от источника стволовых клеток (периферические стволовые клетки vs костный мозг)

Peripheral blood stem cells - B cell count is higher at early stages, but 6 months after HSCT, B cell levels are similar, irrespective of the stem cell source (peripheral blood stem cells vs bone marrow)

Деплеция (TCRab, CD19) Depletion (TCRa|i, CD19)

Нарушение реконституции

Impaired B-cell reconstitution

Серотерапия в кондиционировании

Serotherapy in the conditioning regimen

Неоднозначные данные

Ambiguous data

Миелоаблативное кондиционирование

Myeloablative conditioning

Адекватные темпы иммунной реконституции и продукции Ig

Adequate B cell reconstitution and Ig production

Кондиционирование со сниженной токсичностью

Reduced-intensity conditioning

Не всегда оптимальное восстановление В-клеток, зависимость от трансфузий

внутривенных Ig

Not always optimal B cell reconstitution, intravenous immunoglobulins dependence

Тотальное облучение тела

Total body irradiation

Задержка восстановления В-лимфоцитов

Delayed B cell reconstitution

Острая РТПХ

Acute graft-versus-host disease

Выраженное нарушение восстановления функции и количества В-лимфоцитов

Significantly impaired B cell reconstitution, in both function and numbers

Хроническая РТПХ

Chronic graft-versus-host disease

Низкое количество В-клеток, отсутствие переключенных В-лимфоцитов, снижение регуляторных В-клеток, увеличение активированных В-клеток

A low B cell count, no switched B cells, regulatory B cells are found to be reduced, an increase in the number of activated B cells

В связи с вышеизложенным полноценное восстановление В-клеточного звена иммунитета имеет важное значение в обеспечении защиты от инфекций и адекватного качества жизни.

 

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Таким образом, пролонгированная гипогаммаглобулинемия - это нередкая проблема реципиентов аллогенной ТГСК, осложняющая поздний посттрансплантационный период и приводящая к повышению частоты инфекций и госпитализаций. Звеньями патогенеза данного феномена могут быть патология цитокиновой среды, нарушение созревания В-клеток, блок переключения В-лимфоцитов на синтез специфических Ig. Необходимы более глубокие исследования для понимания комплексной эволюции клеточного и репертуарного восстанов­ления В-лимфоцитов, а также влияния различных факторов, связанных с проведением ТГСК, на формирование иммунного репертуара и функцию гуморального и клеточного иммунитета после трансплантации.

 

ИСТОЧНИК ФИНАНСИРОВАНИЯ

Не указан.

КОНФЛИКТ ИНТЕРЕСОВ

Авторы статьи подтвердили отсутствие конфликта интересов, о котором необходимо сообщить.

 

ORCID

Arakelyan S.K. ORCID: https://orcid.org/0009-0005-7866-7256

Skvortsova Yu.V. ORCID: https://orcid.org/0000-0002-0566-053X

×

About the authors

Susanna K. Arakelyan

Dmitry Rogachev National Medical Research Center of Pediatric Hematology, Oncology and Immunology

Author for correspondence.
Email: susanna2197@gmail.com
ORCID iD: 0009-0005-7866-7256
Russian Federation, Moscow, Russia

Yulia V. Skvortsova

Dmitry Rogachev National Medical Research Center of Pediatric Hematology, Oncology and Immunology

Email: yuscvo@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-0566-053X

MD, Dr. Sci. (Medicine)

Russian Federation, Moscow, Russia

References

  1. Popova N.N., Savchenko V.G. Reconstitution of T-cell-mediated immunity in patients after allogeneic stem cell transplantation. Russian Journal of Hematology and Transfusiology 2020; 65 (1): 24-38. (In Russ.)]
  2. Marie-Cardine A., Divay F., Dutot I., Green A., Perdrix A., Boyer O., et al. Transitional B cells in humans: char¬acterization and insight from B lymphocyte reconstitution after hematopoietic stem cell transplantation. Clin Immunol 2008; 127 (1): 14-25.
  3. Antin J.H., Ault K.A., Rappeport J.M., Smith B.R. B lymphocyte recon-stitution after human bone marrow transplantation. Leu-1 antigen defines a distinct population of B lymphocytes. J Clin Invest 1987; 80 (2): 325-32.
  4. Antin J.H. Emerson S.G., Martin P., Gadol N., Ault K.A. Leu-1+(CD5+) B cells. A major lymphoid subpopulation in human fetal spleen: phenotypic and functional studies. J Immunol 1986; 136 (2): 505-10.
  5. Fillatreau S., Sweenie C.H., McGeachy M.J., Gray D., Anderton S.M. B cells regulate autoimmunity by provision of IL-10. Nat Immunol 2002; 3 (10): 944-50.
  6. Alt F.W., Zhang Y., Meng F.-L., Guo C., Schwer B. Mechanisms of programmed DNA lesions and genomic instability in the immune system. Cell 2013; 152 (3): 417-29.
  7. Van der Maas N. G., Berghuis D., van der Burg M., Lankester A.C. B cell reconstitution and influencing factors after hematopoietic stem cell transplantation in children. Front Immunol 2019; 10: 782.
  8. Abdel-Azim H., Elshoury A., Mahadeo K.M., Parkman R., Kapoor N. Humoral immune reconstitution kinetics after allogeneic hematopoietic stem cell transplantation in children: a maturation block of IgM memory B cells may lead to impaired antibody immune reconstitution. Biol Blood Marrow Transplant 2017; 23 (9): 1437-46.
  9. Gerritsen E.J., van Tol M.J., Lankester A.C., van der Weijden Ragas C.P., Jolvan der Zijde C.M., Oudeman-Gruber N.J., et al. Immunoglobulin levels and monoclonal gammopathies in children after bone marrow transplantation. Blood 1993; 82 (11): 3493-502.
  10. Abrahamsen I.W., Somme S., Heldal D., Egeland T., Kvale D., Tjonnfjord G.E. Immune reconstitution after allogeneic stem cell transplantation: the impact of stem cell source and graft-versus-host disease. Haematologica 2005; 90 (1): 86-93.
  11. Suzuki I., Milner E.C., Glas A.M., Hufnagle W.O., Rao S.P., Pfister L., et al. Immunoglobulin heavy chain variable region gene usage in bone marrow transplant recipients: lack of somatic mutation indicates a maturational arrest. Blood 1996; 87: 1873-80.
  12. Mikhaltsova E.D., Popova N.N., Drokov M.Yu., Kapranov N.M., Davydova Yu.O., Vasilyeva V.A., et al. The impact of regimens for the prevention of graft-versus-host-disease on the recovery of the cellular component of the immune system in patients after allogeneic hematopoietic stem cell transplantation. Medical Immunology 2021; 23 (5): 1125-36 (In Russ.)
  13. Wudhikarn K., Palomba M.L., Pennisi M., Garcia-Recio M., Flynn J.R., Devlin S.M., et al. Infection during the first year in patients treated with CD19 CAR T cells for diffuse large B cell lymphoma. Blood Cancer J 2020; 10 (8): 79.
  14. Sidorova N.V., Pristanskova E.A., Kirgizov K.I., Konstantinova V.V., Burya A.E., Blagonravova O.L., et al. Donor-related factors affecting the outcome of hematopoietic stem cell transplantations in children. Pediatric Hema-tology/Oncology and Immunopathology 2018; 17 (2): 69-75. (In Russ.)
  15. Ohmoto A., Fuji S., Shultes K.C., Savani B.N., Einsele H. Controversies about immunoglobulin replacement therapy in HSCT recipients with hypogammaglobulinemia. Bone Marrow Transplant 2022; 57 (6): 874-80.
  16. Norlin A.C. et al. Allogeneic stem cell transplantation: low immunoglobulin levels associated with decreased survival. Bone Marrow Transplant 2008; 41 (3): 267-73.
  17. Frangoul H., Min E., Wang W., Chandrasekhar R., Calder C., Evans M., et al. Incidence and risk factors for hypogammaglobulinemia in pediatric patients following allo-SCT. Bone Marrow Transplant 2013; 48 (11): 1456-9.
  18. Stein K.E. Thymus-independent and thymus-dependent responses to polysaccharide antigens. J Infect Dis 1992; 165 (Suppl_1): S49-52.
  19. Parkkali T., Ruutu T., Stenvik M., Kuronen T., Kayhty H., Hovi T., et al. Loss of protective immunity to polio, diphtheria and Haemophilus influenzae type b after allogeneic bone marrow transplantation. APMIS 1996; 104 (1-6): 383-8.
  20. Ljungman P., Lewensohn-Fuchs I., Hammarstrom V., Aschan J., Brandt L., Bolme P., et al. Long-term immunity to measles, mumps, and rubella after allogeneic bone marrow transplantation Blood 1994; 84 (1): 657-63.
  21. Ljungman P., Aschan J., Barkholt L., Broliden P.-A., Gustafsson B., Lewensohn-Fuchs I., et al. Measles immunity after allogeneic stem cell transplantation; influence of donor type, graft type, intensity of conditioning, and graft-versus host disease. Bone Marrow Transplant 2004; 34 (7): 589-93.
  22. Guinan E.V.A.C., Molrine D.C., Antin J.H., Lee M.C., Weinstein H.J., Sallan S.E., et al. Polysaccharide conjugate vaccine responses in bone marrow transplant patients. Transplantation 1994; 57 (5): 677-84.
  23. Witherspoon R.P., Storb R., Ochs H.D., Fluornoy N., Kopecky K.J., Sullivan K.M., et al. Recovery of antibody production in human allogeneic marrow graft recipients: influence of time posttransplantation, the pres¬ence or absence of chronic graft-versus-host disease, and antithymocyte globulin treatment. Blood 1981; 58 (2): 360-8.
  24. Hammarstrom V., Pauksen K., Svensson H., Lonnqvist B., Simonsson B., Ringden O., Ljungman P. Serum immunoglobulin levels in relation to levels of specific antibodies in allogeneic and autologous bone marrow transplant recipients. Transplantation 2000; 69 (8): 1582-6.
  25. Engelhard D., Cordonnier C., Shaw P.J., Parkalli T., Guenther C., Martino R., et al. Early and late invasive pneumococcal infection following stem cell transplantation: a European Bone Marrow Transplantation survey. Br J Haematol 2002; 117 (2): 444-50.
  26. Kumar D., Humar A., Plevneshi A., Siegal D., Franke N., Green K., et al. Invasive pneumococcal disease in adult hematopoietic stem cell transplant recipients: a decade of prospective population-based surveillance. Bone Marrow Transplant 2008; 41 (8): 743-7.
  27. Moens L., Wuyts M., Meyts I., De Boeck K., Bossuyt X. Human memory B lymphocyte subsets fulfill distinct roles in the anti-polysaccharide and anti-protein immune response. J Immunol 2008; 181 (8): 5306-12.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
2. The changes in the B cell reconstitution in patients after hematopoietic stem cell transplantation

Download (88KB)
3. Figure 2 Schematic representation of peripheral B-cell development (A) and hypothetical scheme of B cell subset reconstitution (Б): transitional B cells → mature naïve B cells → memory B cells and plasma cells [7]

Download (21KB)
4. Figure 3 The structure of IgG

Download (78KB)
5. Figure 3 2 The structure of IgG

Download (23KB)
6. Figure 4 The B cell receptor structure

Download (17KB)

Copyright (c) 2025 Arakelyan S.K., Skvortsova Y.V.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.